taxonomía tortugas	Superclase tetrapoda Clase reptilia Orden Testudines o testudinata
superorden reptiles	Archosauria: cocos, aves y dinos Lepidosauria: tuátaras, lagartijas, serpientes
Reptil	cuerpo cilindrico, cola alargada y patas laterales
tortugas filogenia	en debate, dificil esclarecer pero diapsida que perdió fenestras (anápsida)
Fenestras	Movilidad del músculo y ligereza Anápsida: sin Diápsida_ 2 fenestras Sinápsida: 1 fenestra
articulación craneal	sinartrosis: inmóviles: máxima fuerza de mordida anfiartrosis Sinoviales: móviles: presas enteras, alimentos de formas raras, succión
Osteordermos	Estructuras óseas de origen dérmico cocos: arco en espalda armadillos: coraza en parte superior Protección contra depredadores en condiciones ambientales adversas regulación térmica archosuromorphia tiene más, sinápsido en escamado
Caparazón y plastrón	Esqueleto axial compuesto por vértebras, costillas y derivadas Se conectan a lo largo de los flancos medios por puentes laterales (ausente en tortugas inmaduras) + de 50 huesos dérmicos, ningún otro orden de vertebrados
Parte ventral del caparazón	fusión de costillas y cuerpos vertebrales arco vertebral incorporado a huesos vertebrales arco vertebral incorporado a huesos vertebrales médula espinal pasa por el espacio entre neurales y cuerpos vertebrales fontanelas
Escudos del caparazón	Estructuras epidérmicas queratinosas que crecen encima de huesos del caparazón aumentan área de margenes aumentan grosor
Cleitro	cintura escapular conectar el cráneo con aleta pectoral En tortugas se cree que se modificó en hueso nucal
Función del cráneo y adaptación	absorbe y distribuye mejor el impacto durante la excavación
Americhelydia	Kinosternidae Chelydridae
Testudinoidae	Emydidae Geomemydidae
Pleurodira y crytodira	no capacidad de retraerse, crypto si
Caparazón suave	Apolene y dermochelys
Familias de tortugas marinas	Cheloniidae Dermochelydae
Basisferoidal	Entre pterigoideo y basioccipital en acuaticos se articula en pterigoideo, reducido en marinas marinas paladar secundario menos dermochelys
Características para identificación	Escamas de la cabeza forma de las mandíbulas # dedos en aletas # y arreglo de placas o escudos caparazónw Escudos se # de frente hacia atrás marginales, laterales, vertebrales nucales, inframarginales
Chelonia mydas identificación craneal	Forma redondeada hocico corto cortes poco profundos mandíbula U crestas
Caretta caretta identificación craneal	grande, ancha cortes grandes mandíbula V robusta paladar 2 largo no crestas huesos maxilares en contacto
Lepidochelys kempii identificación craneal	similar a caretta, diferencias en paladar masomenos triangular cortes bien desarrollados mandíbula V maxilares separados por vomer
Eretmochelys imbricata identificación craneal	largo y angosto cortes profundos hocico puntiagudo maxilares separados por vomer
Lepidochelys olivacea	similar a caguama y kemp triangular, ancha cortes profundos Mandíbula V, no crestas maxilares separadas por vomer orbitales más largo pterigoides anchos procesos marcados
Dermochelys coriacea	ancho y redondeado cavidades orbitales y grandes no cortes parietales sin paladar 2 bordes afilados
Ramfoteca	picos queratinosos de las mandíbulas de miembros de cheloniidae varía según necesidades de sp si afilado: pastos marinos y algas, crujir cangrejos y mariscos
Variación angulo de ojo	depende de hábito y alimentación C mydas es somera y pastos marinos vista hacia abajo
Para diferenciar nido	Ancho, profundidad y simetría
Dermochelys coriacea	simétricas ancho 2,00 profundidad cama 2,50
Chelonia mydas	simétrica ancho 1,00 profundidad 1,50
Lepidochelys olivacea	asimétrica ancho 1,00 profundidad 1,20
Eretmochelys imbricata	asimétrica ancho 0,90 profundidad 1,00
Caretta y caretta	asimétrica ancho 1,00 profundidad 1,50
Como distinguir un rostro sin nido	1 rastro grande con poca perturbación en la arena, sin cama ni excavación 2 rastro en forma de U o M hasta línea de marea alta 3 formación de cama y nido pero sin cubrir 4 Gran perturbación en la arena, formación de cama y excavación poco profunda de la cámara o colapsada
Cómo distinguir una anidación exitosa?	1 arena esparcida o tirada hacia atrás de la huella de salida 2cavidad o cama secundaria con arena dispersa al rededor 3arena húmeda, salpicada en el nido
Nidos depredados	cáscaras de huevos dispersos y huellas 1mapaches: huecos pequeños y profundos amontonados 2perros: grandes en cuña, huevos rotos dispersos 3aves: huellas, huecos anchos, se alimentan de nidos depredados
Huevos	normales e irregulares normales: cáscara flexible, cápsula albúmina, yema, membrana vitelina, sustenta disco embrionario
Determinación del tamaño de nidada y éxito de eclosión	Conservación y manejo de las tortugas #de huevos desovados, el diámetro y peso #que se incuba exitosamente # crías que emergen y #crías que cruzan playa manipular con manos limpias, movidos antes de 4horas o a los 25días
Medir y pesar	Huevo limpio, turgente, hoyuelo,calibrados para diámetro mayor y diámetro menor
Categorización del contenido del nido	siempre guantes conteo de cascarones díficil en huevos no eclosionados: revisar el estado del desarrollo embrionario en que murieron Temperatura, humedad, salinidad, tipo sutrato y gasers
Demandas de huevos de tortugas	1) Permeabilidad= difusión. Menor permeabilidad, mayor protección bacterias y hongos 2) estabilidad mecánica: robustas para soportar golpes al ser ovopositados o al ser arrastrados por el suelo (protección mecánica) 3) reserva de Ca: la matriz calcárea la usan algunos reptiles como cocos y tortus para obtener calcio, haciéndose menos fuerte conforme se acerca eclosión
Comparación de cáscara huevos	Ave: dura, alto grosor, poros reducidos coco: semidura, medio grosor, muchos poros doble capa marina: suave, delgado, poroso el de galiinas tiene chalaza para evitar golpes más albumen: amortiguador y humedad yema: alimentar embrión marinas menor albumen porque pueden hidratarse
Disección	Examen externo: se realizó una descripción completa del cuerpo del organismo. Especie,tamaño y sexo. Presencia de anomalías y heridas y la zona donde se encontraban comenzando la disección: se extrajo plastrón, cortando desde el cuello hacia las regiones axilares, y a lo largo de la juntura entre marginales e inframarginales, evitando cortar hacia dentro de la cavidad Se cortaron músculos longitudinales y pélvicos para exponer vísceras Extracción de cada órgano
Dermochelys coriacea	Carapacho cubierto de piel cuerosa o mosaico no garras crestas dorsales simétrico 2mm y 2,50
Chelonia mydas	1 par de prefrontales 4 laterales e inframarginales mandíbula dentado uñas o garras
Eretmochelys imbricata	2 pares prefrontales 4 costales e inframarginales escudos traslapados escudo nucal NO toca 1 lateral elíptico
Lepidochelys olivacea	4 inframarginales con poros redondo escama inframandibular grande 6 o más laterales muchas supraoculares 1 o 2 garras
Caretta caretta	2 dedos 3 inframarginales poros 3-7 escamas inframandibulares 5 laterales nucal toca 1 lateral
Lepidochelys kempii	redondo 5 laterales 4 inframarginales con poros 2 garras delanteras
Natator depressus	redondo y plano margenes doblados y cubiertos aleta blanca 1 garra
Chelydra	plastrón cruz 4 pares escudos y 1 impar o 5 pares
Kinosternon	5 pares y 1 impar bisagras
Rhinoclemmys	Sin reborde manchas oscuras redondeadas o lineares difusas sobre fondo claro
Trachemys	reborde franjas negras y amarillas sobre fondo verde oscuro o verde
Necropsias	herramientas básicas usadas para determinar la causa de muestre de un animal examen minucioso tanto externo como interno del cadáver observación cuidadosa de lesiones y anormalidades, la obtención de muestras, hacer etiquetas con la infromación exacta y el almacenamiento correcto de las muestras de tejidos

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