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taxonomía tortugas
Superclase tetrapoda
Clase reptilia
Orden Testudines o testudinata
superorden reptiles
Archosauria: cocos, aves y dinos
Lepidosauria: tuátaras, lagartijas, serpientes
Reptil
cuerpo cilindrico, cola alargada y patas laterales
tortugas filogenia
en debate, dificil esclarecer pero diapsida que perdió fenestras (anápsida)
Fenestras
Movilidad del músculo y ligereza
Anápsida: sin
Diápsida_ 2 fenestras
Sinápsida: 1 fenestra
articulación craneal
sinartrosis: inmóviles: máxima fuerza de mordida
anfiartrosis
Sinoviales: móviles: presas enteras, alimentos de formas raras, succión
Osteordermos
Estructuras óseas de origen dérmico
cocos: arco en espalda
armadillos: coraza en parte superior
Protección contra depredadores en condiciones ambientales adversas
regulación térmica
archosuromorphia tiene más, sinápsido en escamado
Caparazón y plastrón
Esqueleto axial compuesto por vértebras, costillas y derivadas
Se conectan a lo largo de los flancos medios por puentes laterales (ausente en tortugas inmaduras) + de 50 huesos dérmicos, ningún otro orden de vertebrados
Parte ventral del caparazón
fusión de costillas y cuerpos vertebrales
arco vertebral incorporado a huesos vertebrales
arco vertebral incorporado a huesos vertebrales
médula espinal pasa por el espacio entre neurales y cuerpos vertebrales
fontanelas
Escudos del caparazón
Estructuras epidérmicas queratinosas que crecen encima de huesos del caparazón
aumentan área de margenes
aumentan grosor
Cleitro
cintura escapular
conectar el cráneo con aleta pectoral
En tortugas se cree que se modificó en hueso nucal
Función del cráneo y adaptación
absorbe y distribuye mejor el impacto durante la excavación
Americhelydia
Kinosternidae
Chelydridae
Testudinoidae
Emydidae
Geomemydidae
Pleurodira y crytodira
no capacidad de retraerse, crypto si
Caparazón suave
Apolene y dermochelys
Familias de tortugas marinas
Cheloniidae
Dermochelydae
Basisferoidal
Entre pterigoideo y basioccipital
en acuaticos se articula en pterigoideo, reducido en marinas
marinas paladar secundario menos dermochelys
Características para identificación
Escamas de la cabeza
forma de las mandíbulas
# dedos en aletas
# y arreglo de placas o escudos caparazónw
Escudos se # de frente hacia atrás
marginales, laterales, vertebrales nucales, inframarginales
Chelonia mydas identificación craneal
Forma redondeada
hocico corto
cortes poco profundos
mandíbula U
crestas
Caretta caretta identificación craneal
grande, ancha
cortes grandes
mandíbula V robusta
paladar 2 largo
no crestas
huesos maxilares en contacto
Lepidochelys kempii identificación craneal
similar a caretta, diferencias en paladar
masomenos triangular
cortes bien desarrollados
mandíbula V
maxilares separados por vomer
Eretmochelys imbricata identificación craneal
largo y angosto
cortes profundos
hocico puntiagudo
maxilares separados por vomer
Lepidochelys olivacea
similar a caguama y kemp
triangular, ancha
cortes profundos
Mandíbula V, no crestas
maxilares separadas por vomer
orbitales más largo
pterigoides anchos
procesos marcados
Dermochelys coriacea
ancho y redondeado
cavidades orbitales y grandes
no cortes parietales
sin paladar 2
bordes afilados
Ramfoteca
picos queratinosos de las mandíbulas de miembros de cheloniidae
varía según necesidades de sp
si afilado: pastos marinos y algas, crujir cangrejos y mariscos
Variación angulo de ojo
depende de hábito y alimentación
C mydas es somera y pastos marinos vista hacia abajo
Para diferenciar nido
Ancho, profundidad y simetría
Dermochelys coriacea
simétricas
ancho 2,00
profundidad cama 2,50
Chelonia mydas
simétrica
ancho 1,00
profundidad 1,50
Lepidochelys olivacea
asimétrica
ancho 1,00
profundidad 1,20
Eretmochelys imbricata
asimétrica
ancho 0,90
profundidad 1,00
Caretta y caretta
asimétrica
ancho 1,00
profundidad 1,50
Como distinguir un rostro sin nido
1 rastro grande con poca perturbación en la arena, sin cama ni excavación
2 rastro en forma de U o M hasta línea de marea alta
3 formación de cama y nido pero sin cubrir
4 Gran perturbación en la arena, formación de cama y excavación poco profunda de la cámara o colapsada
Cómo distinguir una anidación exitosa?
1 arena esparcida o tirada hacia atrás de la huella de salida
2cavidad o cama secundaria con arena dispersa al rededor
3arena húmeda, salpicada en el nido
Nidos depredados
cáscaras de huevos dispersos y huellas
1mapaches: huecos pequeños y profundos amontonados
2perros: grandes en cuña, huevos rotos dispersos
3aves: huellas, huecos anchos, se alimentan de nidos depredados
Huevos
normales e irregulares
normales: cáscara flexible, cápsula albúmina, yema, membrana vitelina, sustenta disco embrionario
Determinación del tamaño de nidada y éxito de eclosión
Conservación y manejo de las tortugas
#de huevos desovados, el diámetro y peso
#que se incuba exitosamente
# crías que emergen y #crías que cruzan playa

manipular con manos limpias, movidos antes de 4horas o a los 25días
Medir y pesar
Huevo limpio, turgente, hoyuelo,calibrados para diámetro mayor y diámetro menor
Categorización del contenido del nido
siempre guantes
conteo de cascarones díficil
en huevos no eclosionados: revisar el estado del desarrollo embrionario en que murieron
Temperatura, humedad, salinidad, tipo sutrato y gasers
Demandas de huevos de tortugas
1) Permeabilidad= difusión. Menor permeabilidad, mayor protección bacterias y hongos
2) estabilidad mecánica: robustas para soportar golpes al ser ovopositados o al ser arrastrados por el suelo (protección mecánica)
3) reserva de Ca: la matriz calcárea la usan algunos reptiles como cocos y tortus para obtener calcio, haciéndose menos fuerte conforme se acerca eclosión
Comparación de cáscara huevos
Ave: dura, alto grosor, poros reducidos
coco: semidura, medio grosor, muchos poros doble capa
marina: suave, delgado, poroso
el de galiinas tiene chalaza para evitar golpes
más albumen: amortiguador y humedad
yema: alimentar embrión
marinas menor albumen porque pueden hidratarse
Disección
Examen externo: se realizó una descripción completa del cuerpo del organismo. Especie,tamaño y sexo. Presencia de anomalías y heridas y la zona donde se encontraban
comenzando la disección: se extrajo plastrón, cortando desde el cuello hacia las regiones axilares, y a lo largo de la juntura entre marginales e inframarginales, evitando cortar hacia dentro de la cavidad
Se cortaron músculos longitudinales y pélvicos para exponer vísceras
Extracción de cada órgano
Dermochelys coriacea
Carapacho cubierto de piel cuerosa o mosaico
no garras
crestas dorsales
simétrico 2mm y 2,50
Chelonia mydas
1 par de prefrontales
4 laterales e inframarginales
mandíbula dentado
uñas o garras
Eretmochelys imbricata
2 pares prefrontales
4 costales e inframarginales
escudos traslapados
escudo nucal NO toca 1 lateral elíptico
Lepidochelys olivacea
4 inframarginales con poros
redondo
escama inframandibular grande
6 o más laterales
muchas supraoculares
1 o 2 garras
Caretta caretta
2 dedos
3 inframarginales poros
3-7 escamas inframandibulares
5 laterales
nucal toca 1 lateral
Lepidochelys kempii
redondo
5 laterales
4 inframarginales con poros
2 garras delanteras
Natator depressus
redondo y plano
margenes doblados y cubiertos
aleta blanca
1 garra
Chelydra
plastrón cruz
4 pares escudos y 1 impar
o 5 pares
Kinosternon
5 pares y 1 impar
bisagras
Rhinoclemmys
Sin reborde
manchas oscuras redondeadas o lineares difusas sobre fondo claro
Trachemys
reborde
franjas negras y amarillas
sobre fondo verde oscuro o verde
Necropsias
herramientas básicas usadas para determinar la causa de muestre de un animal
examen minucioso tanto externo como interno del cadáver
observación cuidadosa de lesiones y anormalidades, la obtención de muestras, hacer etiquetas con la infromación exacta y el almacenamiento correcto de las muestras de tejidos